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Les nudibranches Amakusaplana acroporae

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Les nudibranches Amakusaplana acroporae: est elle une espèce invasive menaçante pour les récifs coralliens?

 

L’Infestions mortels des cultures Acropora avec des vers plats Acropora-manger (AEFW) sont un phénomène mondial.  Nous évaluons l’hypothèse que l’AEFW représente un risque pour les récifs coralliens par l’étude de la biologie et le potentiel invasif d’une souche AEFW au Royaume-Uni.  Les analyses moléculaires ont identifié cette souche comme Amakusaplana acroporae, une nouvelle espèce décrite par deux aquariums américains et un site naturel en Australie.  Nos données moléculaires ainsi que des stratégies d’histoire de vie décrites ici suggèrent que cette espèce représente des cas d’infestations AEFW signalés.  Nous montrons que l’activité parasitaire locale altère la capacité lumière acclimatation de toute la colonie.  A. acroporae acquiert un excellent camouflage par l’hébergement photosynthèse, les zooxanthelles et les pigments de la famille des protéines vert fluorescentes.  Il montre une préférence pour les Acropora validation mais accepte une large gamme d’acropora

 

 Introduction

 

Les récifs coralliens est un écosystème les plus riches en biodiversité et de production dans le monde et sont sensibles aux perturbations dont les effets dévastateurs des corallivore, définies comme l’assimilation directe des tissus des coraux vivants (Hughes et al 2007; Rotjan et Lewis 2008).

L’Infestations mortels d’acroporidae coraux dans une ferme avec des corallivores AEFW ont été signalés à l’échelle mondiale (électronique Matériel supplémentaire, ESM Tableau 1, Fig. 1).  Premiers stades des infestations par les AEFW sont souvent comme des «marques de morsure» pâles (Nosratpour 2008; ESM tableau 1).  Plus récemment AEFW de deux aquariums américains ont été décrits comme une nouvelle espèce (Amakusaplana acroporae) dans les Phylum des Plathelminthes (Rawlinson et al. 2011), qui a ensuite été trouvé sur Acropora validation dans un endroit naturel au large de l’île Lizard, Grande Barrière de Corail (GBR) (Rawlinson et Stella 2012).  Les tripes et le parenchyme de A. acroporae contenues nématocystes et zooxanthelles, ce qui suggère que les dommages causés aux coraux est due à l’alimentation par les planaires (Rawlinson et al 2011;. Rawlinson et Stella 2012).  Une autre planaire d’Acropora associé est un acoel du taxon phylogénétiquement éloigné Waminoa (phylum Acoelomorpha), qui montre une similarité frappante avec phénotypique A. acroporae (Matsushima et al. 2010), ce qui rend difficile d’attribuer l’infestation AEFW signalé à l’un ou l’ d’autres espèces.  En outre, d’autres représentants de Waminoa vivent épizoïques sur les coraux, mais il n’y a pas de rapports sur eux étant corallivores, et leurs zooxanthelles ne proviennent pas des coraux (Barneah et al 2007.).  Ils sont pensés pour ne pas consommer que du mucus des coraux, mais peut nuire le corail par l’ombrage et les effets négatifs liés à la photosynthèse du corail quand ils se produisent en grand nombre (Barneah et al 2007; Haapkylä et al 2009; Naumann et al 2010).  Bien que A. acroporae a été trouvé sur la GBR, l’origine naturelle des répartitions biogéographique des souches d’aquarium de AEFW ne sont pas claires et il n’y a pas de prédateurs naturels connus, il est difficile de contrôler les infestions dans les cultures fermes de corail. Le rapport sur les souches d’aquariums d’AEFW comprennent des régions à proximité de récifs coralliens naturels comme la Floride, la Thaïlande ou à Hong Kong (Fig. 1), ce qui soulève la question de savoir si l’AEFW représentent un risque pour les communautés naturelles du corail s’il est libéré dans l’environnement.  L’introduction d’espèces non connue dans les écosystèmes naturels, y compris les récifs coralliens peut avoir des conséquences dramatiques, et un nombre important d’espèces ornementales sont devenues envahissantes dans les écosystèmes aquatiques (Padilla et Williams, 2004).  L’invasion, par exemple, de la mer Méditerranée par les taxifolia macroalgue taxifolia (Wiedenmann et al., 2001) ou la mer des Caraïbes par le lionfishes Pterois sp.  (Betancur-R et al. 2011) a été déclenchée par la libération de souches d’aquarium.

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Fig. 1
Répartition mondiale des infestations d’AEFW dans les cultures de corail terrestres signalé sur l’Internet (numéros 1-16) et dans la littérature scientifique (lettres A à D). Endroits situés à proximité de récifs coralliens sont mis en évidence par des boîtes dans le style audacieux. Des taches noires montrent la répartition des récifs coralliens tropicaux. La lettre (E) marque l’emplacement où A.acroporae a été trouvé à l’état sauvage (Rawlinson et Stella 2012)

Pour juger le danger que représente l’AEFW que sur des espèces envahissantes pour les récifs naturels, nous avons étudié la biologie d’une souche d’AEFW obtenu du commerce au Royaume-Uni.  Nous avons appliqué des approches en matière de taxonomie moléculaire pour identifier les espèces, analysé de préférence l’hôte, le comportement alimentaire, l’association avec zooxanthelles, les effets sur la physiologie de l’hôte et le temps de survie en l’absence.

 

Méthodes

Culture et aquarium

La souche AEFW acquis auprès d’un commerçant à Southampton (Royaume-Uni) a été recultivées pendant 6 mois avec une gamme diversifiée d’acroporidae et de nombreuses espèces de coraux (ESM tableau 2) dans un compartiment séparé du corail dans un  mésocosmes expérimentale des récifs coralliens au laboratoire au National Oceanography Centre de Southampton (D’Angelo et Wiedenmann 2012). La préférence de l’hôte a été jugée en utilisant un schéma de classification figurant dans le tableau 2 ESM.  Pour les études ultérieures, l’AEFW ont été délogés par un jet d’eau de mer.  La survie en l’absence de coraux  a été évaluée par le maintien de dix spécimens isolés dans un compartiment partiellement ombragé sans avoir accès aux coraux.  Pour tester la réponse de l’AEFW à la hausse des températures, des fragments infestés d’Acropora sp.  ont été soumis à un traitement de la contrainte thermique telle que décrite dans (Wiedenmann et al. 2013).  La croissante horizontale de l’Acropora millepora reproduite en colonies (infestées et non infestées) ont été transformés en 180 °, et acclimaté à la lumière contrôlée par l’augmentation de la fluorescence dans la surface de branche nouvellement exposée de la lumière (D’Angelo et al. 2008).

 

L’identification moléculaire de l’AEFW et la zooxanthelles

L’ADN génomique (ADNg) a été préparé à partir d’un pool de 6 AEFW recueillies à partir d’une colonie de A. millepora infesté et une colonie microphthalma Acropora co-cultivées selon un protocole décrit dans (Hume et al. 2013).

 

Le phylotype des zooxanthelles (. Symbiodinium spp) dans les coraux et la AEFW a été menée par l’amplification, le clonage et le séquençage de l’ADN ribosomique ITS1-5.8S-ITS2 utilisant des amorces spécifiques de zooxanthelles (ESM tableau 3) (Hume et al 2013.; Savage et al. 2002).  Les séquences ont été déposées dans un GenBank (numéros d’accession JN711475-JN711498).

 

La région d’ADNr 18S de l’ADN génomique de l‘AEFW a été amplifié en deux fragments qui se chevauchent, utilisant des amorces conçues contre les régions conservées de Polyclad 18S séquences (ESM tableau 3).  Une paire d’amorces pour amplifier un fragment de 618 pb de la région 28S a été développé en utilisant Polyclad 28S séquences disponibles dans GenBank (Tableau 3 ESM).  Les séquences ont été déposées dans un GenBank (numéros d’accession JN711499-JN711500).

 

L’analyse phylogénétique des séquences 18S et ITS2 a été réalisée en utilisant MEGA 5 (Tamura et al. 2011).  Les séquences ont été alignées en utilisant ClustalW, et des arbres phylogénétiques ont été construits en utilisant le maximum de vraisemblance (ML) des méthodes.  L’analyse a été effectuée pour déduire une méthode de substitution nucléotidique optimale.  Pour une analyse de 18S, une Tamura-Nei avec une distribution gamma et 5 catégories de prix ont été choisis en fonction d’Akaike Information Criterion.  Séquences ITS2 ont été analysées à l’aide du modèle Hasegawa-Kishino-Yano avec des taux égaux.  La certitude de nœuds ML a été testé avec analyse bootstrap (100 réplications).

 

La documentation photographique, des mesures de fluorescence et microscopie

La fluorescence du corail a été imagée en utilisant un filtre passe-haut jaune et un ~ 450 nm source de lumière d’excitation (Nightsea, Andover, Etats-Unis).  Microscopiques gros plans ont été obtenus comme décrit dans (D’Angelo et al 2012; Smith et al 2013).

 

La photosynthèse des zooxanthelles a été déterminée par impulsion modification d’amplitude (PAM) de fluorimétrie en utilisant une plongée-PAM (Walz) pour une piscine de 5 spécimens AEFW.

 

Les spectres de fluorescence ont été enregistrés en utilisant un spectromètre de fluorescence Varian Cary Eclipse (Varian, Palo Alto, États-Unis) (D’Angelo et al. 2008, 2012).

 

 Résultats et discussion

 

Après co-culture des souches AEFW avec un large éventail d’acroporidae et quinze autres espèces de coraux scléractiniaires pendant 6 mois dans un compartiment séparé de notre corail expérimental mésocosmes (D’Angelo et Wiedenmann 2012), les AEFW ont encore été sur les coraux (acroporidae Tableau ESM 2).  La préférence des planaires étaient comme suit: A. validation> A. millepora> A. pulchra> A. Polystoma> A. yongei> A. gemmifera> A. microphthalma> A. tortuosa.  Les AEFW ont atteind une taille jusqu’à   6 mm, on trouve toujours attachés sur les branche ombrées. L’inspection microscopique a révélé l’excellent camouflage de l’AEFW qui imite à la fois la couleur et de distribution de pigment de l’hôte (fig. 2a, c;. ESM figure 1a).  En raison de leur camouflage, l’AEFW pourrait facilement passer inaperçue, mais leur caractéristique décrit précédemment « marques de morsure » sur la face inférieure de la branche (tableau ESM 1) s’est avéré être des indicateurs fiables d’une infestation (Fig. 2e, ESM Fig. 1a). Comme décrit par Rawlinson et al.  (2011), un autre indice de la présence du parasite était grappes de  5 à 90 œufs trouvés uniquement sur squelette nu situé à proximité de vivre tissu corail (ESM Fig. 1b-c).  Les parasites semblent être plutôt stationnaires, et un seul individu a été observé pendant 5 semaines sur un 5 cm de la colonie d’A. millepora avant qu’il soit retiré à des fins expérimentales.  L’activité de cet échantillon, restreint à la face inférieure de la branche, a eu un effet significatif sur la physiologie globale du corail, essentiellement en l’empêchant de s’acclimater à des niveaux plus élevés de lumière (D’Angelo et al 2008; Smith et al 2013) en augmentant l’accumulation de protéines à la partie du branchement de lumière exposée (Fig. 3a).  En conséquence, les colonies infestées étaient moins fluorescent par rapport à leurs homologues sains (Fig. 3b, c; ESM figure 2).  Par conséquent, la fluorescence du corail peut être utilisée comme autre indicateur de la présence de parasites, ce qui souligne le potentiel des protéines GFP pour être servit comme indicateurs de stress pour les coraux (D’Angelo et al. 2012).

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Fig. 2
L’Acquisition du camouflage de l’AEFW.
a, b Microscopie de l’A. pulchra avec un AEFW de la souche aquarium Royaume-Uni ci-joint.
c, d Images du parasite isolé.
e, f photographies en gros plan d’une «marque de morsure » typique laissé par le parasite dans les tissus de la face inférieure de la branche de l’A. pulchra. Les photographies ont été acquises au microscope dans des conditions de lumière blanche (a, c, e) et en mode de fluorescence en utilisant un ensemble CFP / DsRed de filtre (b, d, f).La fluorescence de la chlorophylle est montré en rouge; la fluorescence de la apulFP583 cyan apparaît en bleu. Le spectre g d’émission de fluorescence (λ exc = 420 nm) du tissu de corail hôte (A. pulchra, ligne pointillée) et du parasite isolé (trait plein)
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Fig. 3
L’Effet de AEFW infeste la fluorescence du corail. Le cours de temps de l’acclimatation à la lumière des colonies infestées et non infestées d’une morpho de couleur rouge de A. millepora. L’augmentation de la fluorescence du tissu de l’hôte d’émission (λ ex 530 nm, λ max em = 597 nm) par unité de surface est indiqué. L’accumulation de la protéine fluorescente rouge amilFP597 (D’Angelo et al. 2008 ) dans la zone de branche supérieure a été enregistrée après ce côté auparavant ombragée a été exposé à la lumière.
b Photographies de l’apparition de la lumière du jour (ci-dessus) et la fluorescence verte (ci-dessous) des colonies répétés d’un vert couleur la morpho de l’A. millepora au cours des différentes étapes de l’infestion allant de santé (à gauche), sur infesté (au milieu) et à mort (à droite).
c Comparaison quantitative de la teneur de la protéine GFP-amilFP512 comme dans les colonies représentées sur b exprimée comme une émission de fluorescence par unité de surface (D’Angelo et al. 2008)

Les AEFW recueillies à partir de motifs de fluorescence A. pulchra correspondant parfaitement ceux de l’hôte, avec la fluorescence des coraux étant dérivé du cyan GFP protéine apulFP583 (D’Angelo et al. 2008) et la rouge fluorescence de la chlorophylle de zooxanthelles (Oswald et al. 2,007) (Fig. 2).  En revanche, en fonction de leur stade de développement, ovules et embryons ne montrent qu’une faible fluorescence bleue ou orange sous UV (365 nm) excitation (ESM Fig. 1c).  L’absence de fluorescence dans les points d’alimentation dans les tissus du corail propose que les parasites extraient les pigments fluorescents à partir de l’hôte (Fig. 2f).  Les pigments fluorescents cyan semblent être uniformément répartis dans le parenchyme des parasites, ce qui indique une incorporation de pigments hôtes dans leur forme fonctionnelle pour parfaire le camouflage du parasite (Fig. 2b, d).  Cette stratégie pourrait être facilitée par la grande stabilité et la rotation lente de protéines GFP comme coralliens (Leutenegger et al. 2007).

 

L’analyse moléculaire a montré que les cellules d’algues dans l’AEFW à partir d’une colonie A. millepora sont zooxanthelles.  La répartition des zooxanthelles dans l’AEFW correspondrait étroitement a la communauté algale du corail et étant différente de celle de la co-culture A. microphtalma (Fig. 4a), ce qui prouve que les parasites acquérir des zooxanthelles de l’hôte par l’alimentation.  Cette conclusion est appuyée par le manque de zooxanthelles dans les marques d’alimentation (Fig. 2e; ESM figure 1a).  Un seul AEFW en stress thermique a été observé pour libérer la plupart de ses zooxanthelles quelques secondes après les mouvements de passation (probablement via le pharynx), ce qui démontre que, au moins la plupart des cellules d’algues sont contenues dans l’intestin (Fig. 4b, c).  L’efficacité de la photosynthèse F v / F m> 0,5 déterminé pour les spécimens AEFW indique que leurs zooxanthelles sont la photosynthèse compétente et peut fournir aux parasites avec des avantages nutritionnels.  Les nudibranches sont connus pour être en mesure de mourir de faim pendant des mois (Chintala et Kennedy, 1993).  Fait intéressant, l’AEFW isolées qui n’ont pas accès à l’hôte (corail)  sont morts après 5-7 jours, ce qui suggère que les algues ne représentent pas une source d’énergie importante pour les animaux, mais sont plus susceptibles d’être maintenue uniquement à des fins de camouflage.  Cette stratégie de camouflage est remarquablement présenter, une adaptation évolutive d’A. Acroporae à l’hôte d’acroporidae.  Dans ce contexte, il est intéressant de noter que le camouflage visuellement similaire du représentant Waminoa  peut être le résultat d’une évolution convergente depuis acoels n’ont pas les tripes ramifiés (Hyman 1951).

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Fig. 4
Composition des zooxanthelles (Symbiodinium spp.) Communauté d’une colonie infestée d’A. Millepora, l’AEFW associé et d’une colonie A. microphthalma co-cultivées. Les fréquences d’un sous-clade (C21, C3, Cu) ont été déduite de la fréquence de détection des séquences respectives parmi les fragments clonés ITS2.
b, c Photographies d’un AEFW en stress thermique après l’expulsion des zooxanthelles. Les images ont été acquises sous lumière blanche (b) et en mode de fluorescence (c). Rouge fluorescence de la chlorophylle de zooxanthellae (c) a été documentée par l’utilisation d’un ensemble de filtre à TRITC. Cellules Symbiodinium expulsés (EX) sont visibles dans le coin supérieur droit de panneaux b, c

Des analyses de séquences de la région d’ADNr 18S ont démontré que les groupes de souches Polycladida du Royaume-Uni (ESM Fig. 3a), en  excluant la Waminoa .l’ Analyse de la région ADNr 28S identifié sur la souche Royaume-Uni comme l’A. Acroporae récemment décrit, un AEFW de deux aquariums américains et d’un endroit naturel sur l’île de Lizard (Rawlinson et al 2011; Rawlinson et Stella 2012) (. ESM figure 3b).  Notre séquence ADNr 28S a montré une identité de 100% à la souche de Virginia A. acroporae, mais peut être distinguée dans trois résidus partagés de New York et les souches Lizard Island.  Ces substitutions peuvent indiquer que au moins deux A. distinct moléculaire acroporae souches sont largement distribués dans les aquariums.  Notre enquête mondiale sur les infestations AEFW signalés (figure 1, tableau 1) ESM ainsi que les résultats de la présente étude a révélé que la plupart des AEFWs non identifiés présentent des caractéristiques de A. acroporae comme la préférence exclusive pour une gamme variée d’ acroporidae, l’excellent camouflage , survenue préféré sur les côtés de la branche ombragées, les «marques de morsure» typiques et des grappes d’œufs étant déposé sur des squelettes morts (ESM tableau 1).  A. acroporae a été considéré comme responsable de la perte des colonies d’Acropora à Birch Aquarium (USA) (Nosratpour 2008; Rawlinson et al 2011).  Pris ensemble, ces données suggèrent que A. acroporae est distribué à l’échelle mondiale dans les cultures de fermes de corail, y compris les régions à proximité de récifs coralliens naturels comme la Floride, la Thaïlande ou à Hong Kong (Fig. 1).  Nous concluons que, en raison de la large gamme d’espèces de coraux d’accueil reconnues avec une forte préférence pour la cosmopolite A. validation, avec l’excellent camouflage et la capacité de survivre au moins 5 jours sans hôte (coraux), A. acroporae a le potentiel pour devenir une espèce  invasive dangereuse lorsqu’il est libéré dans un environnement auquel il est non identifié.  Pour mieux catégoriser ce risque potentiel, d’autres données sur l’aire de répartition biogéographique d’A. acroporae dans les récifs du monde entier, sur ses prédateurs naturels et sur la diversité génétique en captivité sont nécessaires de toute urgence.

Source : http://link.springer.com/article/10.1007% 2Fs00338-013-1101-6

Traduit par goggle traduction

Adapté par fredeau

 

A lire aussi : les planaires serial acropora par le dr kate rawlinson, aefw ou planaire d’acopora

Les planaires serial acropora par le Dr Kate Rawlinson

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Les coraux sont au cœur de nombreux réseaux trophiques marins, avec de nombreux invertébrés et les vertébrés antérieurs sur eux.  Dans la nature, la plupart des petits animaux qui vivent et se nourrissent de coraux sont négligeable, le cas échéant, des effets néfastes sur l’hôte de corail.  Cependant, dans les aquariums, où les coraux peuvent être stressés et les nappes de la barrière de diverses alimentaires sont difficiles à recréer, les prédateurs de corail introduites par inadvertance peuvent rapidement tuer leur proie.

Un tel prédateur de corail est le Planaire (Amakusaplana acroporae) (AEFW).  En dépit de son infamie de longue date chez les amateurs, l’AEFW est relativement nouveau pour la science.  En 2011, nous avons décrit l’AEFW comme une nouvelle espèce de ver plat Polycladida, Amakusaplana acroporae, et en 2012, nous avons découvert à l’état sauvage pour la première fois (sur la Grande Barrière de Corail, Australie).  Les aquariophiles et les amateurs ont contribué à faire de cet animal à l’attention des scientifiques, et à poursuivre la collaboration avec les amateurs, nous espérons réaliser des expériences dans des aquariums et dans le domaine pour obtenir une meilleure compréhension de la biologie et de l’écologie AEFW.  Ceci, à son tour, va nous aider à développer des moyens plus efficaces pour lutter contre ce ravageur destructeur.  Dans cet article, je vais vous présenter la AEFW vous (du point de vue d’un biologiste de ver plat), de résumer ce que nous savons actuellement sur l’anatomie du AEFW, biologie de la reproduction, et le cycle de la vie et de souligner certaines des questions que nous allons aborder dans l’avenir.  Dans ce même numéro, Paul Whitby dans son «tenue de récif indemne, l’article va parler plus technique sur la façon de traiter avec ces organismes nuisibles (ou voir intéressants!).

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Figure 1. La position de l’évolution de l’AEFW par rapport à d’autres animaux. Ce schéma est un arbre de l’évolution simplifiée de notre compréhension actuelle des relations des animaux basée sur l’analyse de plusieurs séquences d’ADN.

Quelle est l’AEFW et où est-il trouvé?

L’AEFW est un ver plat de Polycladida.  Ces vers plats sont un groupe de vers marins appartenant aux Phylum des Plathelminthes (un phylum est le terme pour un grand groupe d’animaux connexes, comme les mollusques ou des arthropodes).  Les Phylum des Plathelminthes comprend plusieurs groupes vivant en liberté (comme les Polycladida et triclads ou planaire) et aussi de nombreuses espèces parasites (comme les ténias, les douves du foie et schistosomes). Au premier coup d’œil Polycladida, avec leur morphologie simple et la forme du corps plat, sont souvent confondus avec d’autres invertébrés comme les mollusques nudibranches ou des vers de acoel.  En effet, acoels (par exemple, les espèces Convolutriloba et Waminoa qui sont communs dans les aquariums récifaux) étaient autrefois considérés comme des vers plats, mais une récente ré-analyse des relations évolutives des animaux (Figure 1) a révélé qu’ils ne sont pas étroitement liés à tous.

Les planaires Polycladida varient en taille de microscopique à plus de 10 cm de longueur.  On les trouve dans tous les océans, du littoral à la haute mer, et des pôles aux tropiques.  Bien que l’AEFW a été un ravageur problématique aux amateurs de corail dans les Amériques, en Europe et en Australasie pour la dernière décennie, il n’avait pas été préalablement enregistré à l’état sauvage.  Ainsi, dans une tentative de placer dans son habitat naturel (nous aquariophiles amateurs, et moi-même) avons dressé une liste de toutes les espèces Acropora touchés par l’AEFW (Acropora valida, A. pulchra, A. millepora, A. tortuosa, A. nana, A. tenuis, A. formosa, A. echinata, A. yongei), cartographié leurs distributions naturelles collectives, et vu qu’ils sont tous des espèces de petits polypes trouvés dans la région Indo-Pacifique.  Mon collaborateur, Jessica Stella (James Cook University, Queensland, Australie), s’est ensuite rendu à son site d’étude dans le lagon Lizard Island, au nord de la Grande Barrière de Corail, et choisi au hasard 10 colonies de Acropora valida.  A notre grande surprise, la AEFW était présent sur 7 des 10 colonies avec une moyenne de 2-3 vers par colonie.  Nous avions imaginé que la recherche de l’AEFW dans la nature serait comme chercher une aiguille dans une botte de foin – mais nous avons trouvé de l’or pour la première fois!  Nos premières observations suggèrent que la AEFW est commun, mais pas très abondante (2-3 animaux par colonie par rapport aux 100 eme de personnes ont trouvé sur les colonies fortement infestées dans les aquariums). La localisation de l’AEFW dans la nature, et à proximité de la station de recherche Lizard Island, va maintenant nous permettre d’étudier c’est interactions écologiques, évaluer son impact sur le récif et de déterminer la population détenue.  Ces expériences nous l’espérons, de faire la lumière sur les contrôles biologiques potentiels qui peuvent ensuite être utilisés dans des systèmes fermés.

Une planaire prédatrice très sophistiqués – Adaptations aux corallivore?

Le polycladida adultes antérieurs sur une variété d’invertébrés marins, y compris les mollusques, ascidies, crustacés et cnidaires.  Certaines de ces espèces proies ont une importance commerciale pour la nourriture (par exemple, l’huître (Crassostrea rhizophorae) et de moules (Mytilus galloprovincialis) et pour l’industrie de l’aquarium (par exemple, le bénitier, Tridacna gigas et les coraux des genres Acropora et Montipora).  Alors que certaines espèces polycladida sont généralement des aliments pour une grande variété d’animaux, d’autres s’attaquent spécifiquement sur une seule proie.  Ces vers plats présentent souvent des outils et astuces pour capturer et manger leurs proies, telles que l’utilisation de la neurotoxine mortelle, la tétrodotoxine, de paralyser la proie mobile comme gastéropodes.

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Figure 2. L’AEFW adulte sur une Acropora spp avec des traces de morsures à droite (flèches) (échelle = 5 mm).

 

L’AEFW fait des morsures circulaires sur le tissu de l’Acropora, la tête se forme de tube pharynx et suce (ou utilisant des enzymes digérant) le tissu du corail à partir du squelette.  Le tissu est ensuite passé corail du pharynx par l’intermédiaire de la branche principale de l’intestin, où il est distribué le long des branches de bifurcation latérale du tube digestif. Les polycladida tirent leur nom de leur intestin très ramifié (poly = beaucoup, clad = branche) et digère le tissu du corail et les zooxanthelles dans les branches de l’intestin qui camouflent la AEFW si bien contre le corail (figure 2).  Pharynx tubulaire de l’AEFW est inhabituel parce qu’il a une fissure profonde qui longe sa longueur (figure 4a).  Le seule autre polycladida avec un pharynx fente est le Prosthiostomum montiporae, qui se nourrit aussi de corail (Montipora verrucosa – [16,17]).  Nous pensons que ce type de pharynx, une fois saillie, peut être ouverte le long de la fente et s’étend sur un vaste domaine de l’alimentation plus efficace, et pourrait avoir évolué spécifiquement en tant que mécanismes pour faire progresser sur des surfaces inégales du corail.

Comment le AEFW évite ou survit les défenses du coralliens (par exemple nématocystes et couches muqueuses) est inconnu.  En regardant les coupes de tissus microscopiques de ces vers, les nématocystes qui sont présents dans l’intestin sont apparus non cuite (figure 4b) et il n’y a aucune preuve que ces vers utilisent les cellules urticantes dans leur propre défense contre les prédateurs.  Il n’est pas aussi connu que les zooxanthelles (Symbiodinium) du corail sont tout simplement digéré par le AEFW, ou si elles vivent comme symbiotes dans la vis sans fin, en fournissant une source supplémentaire de la nutrition.  Comprendre combien de temps le AEFW peut survivre sans Acropora sera important de connaître la durée de conservation d’un réservoir Acropora sans pour tuer tous les vers.

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Figure 3. (A) L’AEFW adulte (photo de Joseph Weatherson), (b) le tissus débarrassé de AEFW, (c) schéma de (b) montrant l’anatomie de AEFW, (d) schématique du système digestif en bleu, c’est un très simplifiée illustration comme les branches de l’intestin forment un réseau très complexe de canaux
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Figure 4. Sections transversales à travers une AEFW montrant (a) du pharynx tubulaire fissure, (b) nématocystes Acropora et zooxanthelles dans le tube principal de l’intestin AEFW.

Il est actuellement peu de données disponibles sur les espèces qui se nourrissent de vers plats de polycladida.  Les poissons récifaux, comme le napoléon de lune (Thalassoma de lunare), ont été signalés à nourrir polycladida dans la nature, et les AEFW adultes sont souvent consommés par les différentes espèces de poissons (par exemple Halichoeres chrysus, H. iridis, Macropharyngodon ornatus, Labroides dimidiatus, Synchiropus ocellatus et S. splendidus) pour les délogé du corail, mais il est important de noter que la AEFW a probablement différents prédateurs à différents stades de son cycle de vie.  Par conséquent, nous espérons réaliser des expériences supplémentaires pour comprendre ce que mange et quand.

 

Reproduction et cycle de vie

Tous les polycladida sont hermaphrodites (c’est à dire tous les individus possèdent à la fois mâle et structures reproductrices femelles), mais ils ne sont pas connus pour l’autofécondation.  Les œufs sont protégés de l’environnement par les prédateurs et une capsule d’œuf, et des dizaines de capsules d’œufs multiples forment une plaque d’œuf, qui est collé sur un substrat.  Le temps d’incubation de 5 à 25 jours, selon le mode de développement et des conditions environnementales, comme la température.  Certaines espèces polycladida subissent un développement indirect, et la trappe comme une larve qui se nourrit dans la colonne d’eau avant de s’installer sur le fond océanique et se métamorphoser en un adulte.  Ce stade larvaire pourrait augmenter le potentiel de dispersion de l’espèce et de maximiser les chances de trouver un habitat convenable pour adultes.  D’autres espèces développer directement à partir d’embryons dans les adultes (en contournant un stade larvaire), et par conséquent, avoir un potentiel de dispersion plus limitée.  Enfin, il y a des modes intermédiaires de développement qui ne sont ni directe ni indirecte, comme on le voit dans le AEFW (voir ci-dessous).

AEFW mature peut mesurer 2-3cm de longueur et, comme vous pouvez le voir par le nombre et la distribution des œufs à la figure 3 (b et c), ils sont très féconde.  Combien de descendants un adulte peut produire n’est pas connue, mais il est probablement proche de 1000.  Ils se reproduisent sexuellement, mais que ce soit par insémination hypodermique (injection de spermatozoïdes à travers la peau) ou la copulation (vous savez comment cela fonctionne!) N’est pas connue.  L’AEFW met plusieurs embryons (entre 3-7) dans chaque capsule d’œuf (figure 5a) et ces capsules sont collées sur le squelette de corail nu, normalement près de la base de la colonie (figure 5b).  La durée du développement a l’intérieur de la capsule d’œuf est d’environ 21 jours à 76-78F (25°C).

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Figure 5. (A) lot d’œufs avec des capsules éclos et d’autres contenant entre 3 et 7 embryons (échelle = 1 mm), (b) lot d’œufs lié au squelette de corail prochainement à vivre sur le tissu corallien (échelle = 2 mm).

 

Nous avons seulement étudié développement et des cycles de vie AEFW dans les aquariums jusqu’à présent, mais ce que nous avons découvert est très intéressant.  Nouveau-nés AEFW (chiffre 7a) sont très petits (250-300m de longueur et 110-130m de largeur, soit 0,3 mm x 0,1 mm), et une fois éclos, ils rampent sur le squelette de corail, où ils commencent à se nourrir de tissu de corail tissu.

Les jeunes AEFW immatures après l’éclosion semblent subir un développement corporel que l’adulte et en contournant un stade larvaire.  Le développement direct impliquerait une capacité limitée de la natation et faible potentiel de dispersion.  Cependant, lorsque nous avons étudié leur développement embryonnaire, nous avons remarqué que les embryons se développaient caractéristiques en larvaires.  Il s’agit notamment des touffes ciliaires et les lobes, qui facilitent habituellement la natation et de l’alimentation dans la colonne d’eau (figure 6e).  Cependant, les embryons AEFW perdaient ces caractéristiques larvaires et subissent la métamorphose dans la capsule d’œuf avant l’éclosion.  Ce processus est connu comme «métamorphose intra-capsulaire» et est un type de développement intermédiaire.

Cela suggère que l’AEFW retarde l’éclosion jusqu’à après la métamorphose, réduisant ainsi le potentiel de dispersion et de retenir progéniture dans ou près de son habitat natal, et source de nourriture.  Descendants conservant peut-être sur leur source de nourriture est une stratégie de reproduction de mieux que de les laisser nager au loin pour trouver leur propre colonie Acropora, qui sur le récif peut être distribué très inégale.  Une alternative (et lunatique) scénario est que la métamorphose intra-capsulaire est une adaptation à la vie dans les aquariums.  Si elles éclore sous forme de larves, de nager dans la colonne d’eau, ils se filtré, de sorte que seules les personnes qui éclosent tard et de rester sur le corail pour survivre et se reproduire!

Nous avons besoin de nouveau-nés et de nombreux autres lots d’œufs dans les aquariums et dans la nature pour voir si tous les individus subissent une métamorphose intra-capsulaire.  Il y a une chance que nous pourrions voir certaines personnes à couver sous forme de larves et d’autres comme des mineurs et cela peut être une stratégie pari-couverture (sauvegarde les deux cotes: la rétention et la dispersion) ou il peut une accroche environnement déterminer le moment de l’éclosion.

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Figure 6. (A) l’AEFW en embryon pré-éclosion, (b)l’AEFW en embryon coloré avec un anticorps qui est utilisée pour visualiser les cils (poils) – montre conciliation de toute la surface de l’animal, y compris plus longues touffes ciliaires sur les lobes larvaires, (c) l’AEFW en embryon colorée pour indiquer que c’est muscles, note saillie de lobes larvaires, (d) l’AEFW nouveau-nés, (e) et (f) les nouveau-nés avec des cils et des muscles colorés, note la perte de lobes et des touffes ciliaires. Échelle barres de 50 m. (Microscopie à balayage laser confocal-CLSM).

 

Alors qu’est-ce que cela signifie pour la dispersion de l’AEFW autour de votre récifal ?  Les planaires adultes ne  savent pas nager et probablement ne se transfèrent pas très facilement entre les colonies, en particulier pendant les heures de lumière, comme ils le seraient vulnérables aux prédateurs visuels.  Ils pourraient être plus aventureux dans l’obscurité, comme la plupart des polycladida sont plus actifs la nuit.  Le recrutement sur les colonies de coraux voisins qui sont à proximité arrive probablement au stade de nouveau-nés.  Quand ils éclosent, et avant qu’ils obtiennent une bonne adhérence sur le squelette de corail, ils seraient susceptibles d’être emportés par aucun courant.

 

Combien de temps cela prend pour le nouveau-nés à la maturité sexuelle n’est pas connue, ce sera probablement dépendre si il est une bonne source d’Acropora pour se nourrir.  D’après nos observations d’AEFW de l’île Lizard, la planaire qui étaient sur 4 mm de long avaient des systèmes de reproduction des femelles mâle adulte.  Il y a encore une énorme quantité d’informations à en apprendre davantage sur cet animal et j’espère que je peux continuer à travailler avec vous pour répondre à certaines de ces questions.

Compréhension de la biologie et de l’écologie de l’AEFW ne peut aider à contrôler ce ravageur!

 

 

Source : http://www.reefs.com/magazine/145123-mucous-trail-coral-killers-acropora-eat

Traduit par google

Adapté par Fredeau

 

 

AEFW ou planaire d’acropora

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Demat

Depuis quelques temps de plus en plus de personnes se retrouve confrontés a un parasite qui s’appelle en anglais AEFW ou planaire d’acropora

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Un planaire d’acropora adulte

Qui sont ils: AEFW (Acropora Eating Flatworms) sont des planaires d’acropora  plats qui vivent en parasites sur les banches des acropora. Leurs tailles allant jusqu’à 17mm de long sur 10 mm Ils passent inaperçu lors d’un achat de frag mais ils restent un grand danger pour votre bac si vous ne traitez pas les nouveaux frags. Ils se reproduisent rapidement et détruire des colonies d’acropora rapidement. L’incubation est d’environ 21 jours avec des grappes 20 à 26 d’œufs observés trouvés sur le squelette corallien nu et a l’abri de la lumière.

Comment savoir et reconnaitre un acropora infecté :

Les Acropora infectés a souvent des polypes non déployés, une légère nécrose au pied ou sur les branches, des traces de morsures sur les tissus, des œufs sur la nécroses et le corail perd sa couleur éclatante

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Acropora loripès en mal au point, on distinct bien les morsures

 

Le traitement chimique :

Le seul produit commercialisé et qui donne de bon résultat c’est le corail rx pour les nudibranches, la dose prescrite est un litre d’eau pour 8 gouttes et de faire un bain de quinze minute au corail infectés mais attention aux œufs le produit ne les tuent pas, il faudra les gratter soigneusement avec soit un scalpel ou soit a la brosse a dent. Au bout d’une semaine refaite un traitement, regarder bien si vous ne retrouvez pas des œufs car généralement les parents sont pas loin due la nurserie.

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Après un traitement au corail rx, il ne reste plus que les planaires

 

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Les oeufs sur la partie nécrosé du corail

 

Le traitement Biologique :

Essayez de labres des Halichoeres genres, Psuedocheilinus et garder les crabes symbiotiques

Conclusion :

J’espère que j’ai donné de nombreuses astuces pour exterminer la cochonnerie de votre bac et, cette peste agie quand la santé de l’aquarium n’est pas très bonne

Articles a voir :

http://reefkeeping.com/issues/2007-09/mc/index.php

http://reefbuilders.com/2011/04/15/acropora-eating-flatworms/

http://www.melevsreef.com/aefw.html

http://www.leonardosreef.com/2012/01/aefw-treatment-how-to-get-rid-of-them/